УТИЛИЗАЦИЯ УГЛЕКИСЛОГО ГАЗА С УЧЕТОМ КЛИМАТИЧЕСКИХ ОСОБЕННОСТЕЙ РЕГИОНА
DOI:
https://doi.org/10.17122/ntj-oil-2023-2-174-194Ключевые слова:
декарбонизация, углекислый газ, климат, парниковый эффект, микроорганизмыАннотация
На основании обзора литературы показано, что в стране имеется большое количество квалифицированных специалистов по выращиванию микроводорослей для поглощения углекислого газа, несмотря на кажущуюся сложность этого метода в сравнении с методом закачивания его в пласт. Поскольку поглощение микроводорослью рода хлорелла происходит с использованием энергии солнечного света, то при его достаточном количестве обходятся без выбросов дополнительного количества углекислого газа. Эта технология, как ника- кая другая, зависит от климатических условий: в климате со среднегодовой температурой ниже 0 °С культивирование водоросли нецелесообразно, здесь единственно приемлемая технология – это сжижение углекислого газа и закачивание его в пласт. В умеренном климате, в котором расположено наибольшее количество предприятий и городов Европы и России, необходимо чередовать технологии, то есть в летнее время культивировать большие площади хлореллы по предложенной в статье технологии, а в зимний – уменьшать площадь и часть углекислого газа закачивать в хранилище.
Библиографические ссылки
Icha P. Climate Change 45/2021. Entwicklung der Spezifischen Kohlendioxid-Emissionen des Deutschen Strommix in den Jahren 1990-2020. Dessau-Roßlau: Umweltbundesamt, 2021. 29 p. URL: https://www.umweltbundesamt.de/sites/default/files/medien/5750/publikationen/2021-05-26_cc-45-2021_ strommix_2021_0.pdf (дата обращения: 07.10.2022).
Energy Returned on Energy Invested // Deru.Abcdef.Wiki. URL: https://deru.abcdef. wiki/wiki/Spezifische_Kohlendioxid-Emission (дата обращения: 07.10.2022).
Федеральный закон от 02.07.2021 № 296-ФЗ «Об ограничении выбросов парниковых газов» // Официальный интернет-портал правовой информации. URL: http://publication.pravo.gov.ru/Document/View/0001202107020031 (дата обращения: 07.10.2022).
Рубин Е.Л. Физиология растений: В 2 Т. М.: Сов. наука, 1954. Т. 1. 356 с.
Telegram-канал президента НАНГС // Telegram. URL: https://t.me/VBKhaikov (дата обращения: 07.10.2022).
Каблов Е.Н., Старцев В.О. Системный анализ влияния климата на механические свойства полимерных композиционных материалов по данным отечественных и зарубежных источников (Обзор) // Авиационные материалы и технологии. 2018. № 2 (51). С. 47-58. DOI: 10.18577/2071-9140-2018-0-2-47-58.
Каблов Е.Н., Старцев В.О. Измерение и прогнозирование температуры образцов материалов при экспонировании в различных климатических зонах // Авиационные материалы и технологии. 2020. № 4 (61). С. 47-58. DOI: 10.18577/2071-9140-2020-0-4-47-58.
Лаптев А.Б., Голубев А.В., Киреев Д.М., Николаев Е.В. К вопросу биодеструкции полимерных материалов в природных средах (Обзор) // Труды ВИАМ. 2019. № 9 (81). С. 100-107. URL: http://viam-works.ru/ru/articles?art_id=1466 (дата обращения: 07.10.2022). DOI: 10.18577/2307-6046-2019-0-9-100-107.
Каблов Е.Н., Лаптев А.Б., Прокопенко А.Н., Гуляев А.И. Релаксация полимерных композиционных материалов под длительным воздействием статической нагрузки и климата (Обзор). Часть 1. Связующие // Авиационные материалы и технологии. 2021. № 4 (65). С. 70-80. DOI: 10.18577/2713-0193-2021-0-4-70-80.
Лаптев А.Б., Николаев Е.В., Куршев Е.В., Горяшник Ю.С. Особенности биодеструкции термопластов на основе полиэфиров в различных климатических зонах // Труды ВИАМ. 2019. № 7. С. 84-91. URL: http://viam-works.ru/ru/articles? art_id=1441 (дата обращения: 07.10.2022). DOI: 10.18577/2307-6046-2019-0-7-84-91.
Tourova T.P., Sokolova D.S., Nazina T.N., Grouzdev D.S., Laptev A.B. Phylogenetic Diversity of Microbial Communities from the Surface of Polyethylene Terephthalate Materials Exposed to Different Water Environments // Microbiology. 2020. Vol. 89. P. 96-106. DOI: 10.1134/S0026261720010154.
Энергетические показатели различных видов транспорта // Lokomo. URL: https://lokomo. ru/info/energeticheskie-pokazateli-razlichnyh-vidov-transporta.html (дата обращения: 07.10.2022).
Методика оценки эффективности использования электроэнергии на перекачку нефти в условиях снижения объемов перекачки нефти. Уфа.: Институт механики УНЦ РАН, 1999. 35 с.
Распоряжение Минприроды России от 16.04.2015 № 15-р «Об утверждении методических рекомендаций по проведению добровольной инвентаризации объема выбросов парниковых газов в субъектах Российской Федерации» // Электронный фонд правовых и нормативно-технических документов. URL: https://docs. cntd.ru/document/420278225 (дата обращения: 07.10.2022).
Livansky K., Doucha J. Utilization of Carbon Dioxide by Chlorella Kessleri in Outdoor Open Thin-Layer Culture Units // Algological Studies. 2005. No. 116 (1). P. 201-212. DOI: 10.1127/1864-1318/2005/0116-0201.
El-Sayed A.B., Battah M.G., El-Sayed E.W. Utilization Efficiency of Artificial Carbon Dioxide and Corn Steam Liquor by Chlorella Vulgaris // Biolife. 2015. Vol. 3, Issue 2. P. 391-403.
Chen H., Wang J., Zheng Y., Zhan J., He C., Wang Q. Algal Biofuel Production Coupled Bioremediation Of Biomass Power Plant Wastes Based on Chlorella sp. C2 Cultivation // Applied Energy. 2018. Vol. 211. P. 296-305. DOI: 10.1016/j.apenergy.2017.11.058.
Yadav G., Karemore A., Dash S.K., Sen R. Performance Evaluation of A Green Process for Microalgal CO2 Sequestration in Closed Photobioreactor Using Flue Gas Generated In-Situ // Bioresource Technology. 2015. Vol. 191. Р. 399-406. DOI: 10.1016/j.biortech.2015.04.040.
Kandimalla P., Desi S., Vurimindi H. Mixotrophic Cultivation of Microalgae Using Industrial Flue Gases for Biodiesel Production // Environmental Science and Pollution Research. 2016. Vol. 23. Р. 9345-9354. DOI: 10.1007/s11356-015-5264-2.
Kuo C.M., Jian J.F., Lin T.H., Chang Y.B., Wan X.H., Lai J.T., Chang J.S., Lin C.S. Simultaneous Microalgal Biomass Production and CO2 Fixation by Cultivating Chlorella sp. GD with Aquaculture Wastewater and Boiler Flue Gas // Bioresource Technology. 2016. Vol. 221. Р. 241-250. DOI: 10.1016/j.biortech.2016.09.014.
Duarte J.H., Fanka L.S., Costa J.A.V. Utilization of Simulated Flue Gas Containing CO2, SO2, NO and Ash for Chlorella Fusca Cultivation // Bioresource Technology. 2016. Vol. 214. Р. 159-165. DOI: 10.1016/j.biortech.2016.04.078.
Garcia-Cubero R., Moreno-Fernandez J., Garcia-Gonzalez M. Potential of Chlorella vulgaris to Abate Flue Gas // Waste Biomass Valorization. 2017. Vol. 9, Issue 8. Р. 2015-2019. DOI: 10.1007/s12649-017-9987-9
Kao C.Y., Chen T.Y., Chang Y.B., Chiu T.W., Lin H.Y., Chen C.D., Chang J.S., Lin C.S. Utilization of Carbon Dioxide in Industrial Flue Gases for the Cultivation of Microalga Chlorella sp. // Bioresource Technology. 2014. Vol. 166. Р. 485-493. DOI: 10.1016/j.biortech.2014.05.094.
Ахияров Р.Ж., Латыпов О.Р. Расчет устройств для подавления жизнедеятельности сульфатвосстанавливающих бактерий // Нефтегазовое дело. 2008. Т. 6, № 1. С. 234-238.
Praveenkumar R., Kim B., Choi E., Lee K., Park J.Y., Lee J.S., Lee Y.C., Oh Y.K. Improved Biomass and Lipid Production in a Mixotrophic Culture of Chlorella sp. KR-1 with Addition of Coal-Fired Flue-Gas // Bioresource Technology. 2014. Vol. 171. Р. 500-505. DOI: 10.1016/j.biortech.2014.08.112.
Cheng D., Li X., Yuan Y., Zhao Q. Kinetic Model for Effects of Simulated flue Gas Onto Growth Profiles of Chlorella sp. AE10 and Chlorella sp. Cv // Biotechnology and Applied Biochemistry. 2020. Vol. 67. Р. 783-789. DOI: 10.1002/bab.1829.
Kumar K., Banerjee D., Das D. Carbon Dioxide Sequestration from Industrial Flue Gas by Chlorella Sorokiniana // Bioresource Technology. 2014. Vol. 152. Р. 225-233. DOI: 10.1016/j.biortech. 2013.10.098.
Bhola V., Swalaha F.M., Nasr M., Bux F. Fuzzy Intelligence for Investigating the Correlation Between Growth Performance and Metabolic Yields of a Chlorella sp. Exposed to Various Flue Gas Schemes // Bioresource Technology. 2017. Vol. 243. Р. 1078-1086. DOI: 10.1016/j.biortech.2017.07.031.
Li D., Wang L., Zhao Q., Wei W., Sun Y. Improving High Carbon Dioxide Tolerance and Carbon Dioxide Fixation Capability of Chlorella sp. by Adaptive Laboratory Evolution // Bioresource Technology. 2015. Vol. 185. Р. 269-275. DOI: 10.1016/j.biortech.2015.03.011.
Jain D., Ghonse S.S., Trivedi T., Fernandes G.L., Menezes L.D., Damare S.R., Mamatha S., Kumar S., Gupta V. CO2 Fixation and Production of Biodiesel by Chlorella Vulgaris NIOCCV Under Mixotrophic Cultivation // Bioresource Technology. 2019. Vol. 273. Р. 672-676. DOI: 10.1016/j.biortech.2018.09.148.
Kao C.Y., Chiu S.Y., Huang T.T., Dai L., Hsu L.K., Lin C.S. Ability of a Mutant Strain of the Microalga Chlorella sp. to Capture Carbon Dioxide for Biogas Upgrading // Applied Energy. 2012. Vol. 93. Р. 176-183. DOI: 10.1016/j.apenergy.2011.12.082.
Li J., Tang X., Pan K., Zhu B., Li Y., Ma X., Zhao Y. The Regulating Mechanisms of CO2 Fixation and Carbon Allocations of Two Chlorella sp. Strains in Response to High CO2 Levels // Chemosphere. 2020. Vol. 247. Article No. 125814. DOI: 10.1016/j.chemosphere.2020.125814.
Chou H.H., Su H.Y., Song X.D., Chow T.J., Chen C.Y., Chang J.S., Lee T.M. Isolation and Characterization of Chlorella sp. Mutants with Enhanced Thermo- and CO2 Tolerances for CO2 Sequestration and Utilization of Flue Gases // Biotechnology for Biofuels. 2019. Vol. 12. Article No. 251.
Vadlamani A., Viamajala S., Pendyala B., Varanasi S. Cultivation of Microalgae at Extreme Alkaline pH Conditions: A Novel Approach for Biofuel Production // ACS Sustainable Chemistry and Engineering. 2017. Vol. 5. Р. 7284-7294. DOI: 10.1021/acssuschemeng.7b01534.
Vadlamani A., Pendyala B., Viamajala S., Varanasi S. High Productivity Cultivation of Microalgae without Concentrated CO2 Input // ACS Sustainable Chemistry and Engineering. 2019. Vol. 7. Р. 1933-1943. DOI: 10.1021/acssuschemeng.8b04094.
Sachdeva N., Gupta R.P., Mathur A.S., Tuli D.K. Enhanced Lipid Production in Thermo-Tolerant Mutants of Chlorella Pyrenoidosa NCIM 2738 // Bioresource Technology. 2016. Vol. 221. Р. 576-587. DOI: 10.1016/j.biortech.2016.09.049.
Lee T.M., Tseng Y.F., Cheng C.L., Chen Y.C., Lin C.S., Su H.Y., Chow T.J., Chen C.Y., Chang J.S. Characterization of a Heat-Tolerant Chlorella sp. GD Mutant with Enhanced Photosynthetic CO2 Fixation Efficiency and its Implication as Lactic Acid Fermentation Feedstock // Biotechnology for Biofuels. 2017. Vol. 10. Article No. 214. DOI: 10.1186/s13068-017-0905-y.
Mehta P., Rani R., Gupta R., Mathur A.S., Puri S.K. Biomass and Lipid Production of a Novel Freshwater Thermo-Tolerant Mutant Strain of Chlorella Pyrenoidosa NCIM 2738 in Seawater Salinity Recycled Medium // Algal Research. 2018. Vol. 36. Р. 88-95. DOI: 10.1016/j.algal.2018.10.015.
Varshney P., Beardall J., Bhattacharya S., Wangikar P.P. Isolation and Biochemical Characterisation of Two Thermophilic Green Algal Species – Asterarcys Quadricellulare and Chlorella Sorokiniana, Which are Tolerant to High Levels of Carbon Dioxide and Nitric Oxide // Algal Research. 2018. Vol. 30. Р. 28-37. DOI: 10.1016/j.algal. 2017.12.006.
Chiu S.Y., Kao C.Y., Huang T.T., Lin C.J., Ong S.C., Chen C.D., Chang J.S., Lin C.S. Microalgal Biomass Production and On-Site Bioremediation of Carbon Dioxide, Nitrogen Oxide and Sulfur Dioxide from Flue Gas Using Chlorella sp. Cultures // Bioresource Technology. 2011. Vol. 102. Р. 9135-9142. DOI: 10.1016/j.biortech.2011.06.091.
Shahid A., Malik S., Zhu H., Xu J., Nawaz M.Z., Nawaz S., Alam A., Mehmood M.A. Cultivating Microalgae in Wastewater for Biomass Production, Pollutant Removal, and Atmospheric Carbon Mitigation; a Review // Science of The Total Environment. 2020. Vol. 704. Article No. 135303. DOI: 10.1016/j.scitotenv.2019.135303.
Moreno-Garcia L., Gariepy Y., Bourdeau N., Barnabe S., Raghavan G. Optimization of the Proportions of Four Wastewaters in a Blend for the Cultivation of Microalgae Using a Mixture Design // Bioresource Technology. 2019. Vol. 283. Р. 168-173. DOI: 10.1016/j.biortech.2019.03.067.
Hussain F., Shah S.Z., Ahmad H., Abubshait S.A., Abubshait H.A., Laref A., Manikandan A., Kusuma H.S., Iqbal M. Microalgae an Ecofriendly and Sustainable Wastewater Treatment Option: Biomass Application in Biofuel and Bio-Fertilizer Production // Renewable and Sustainable Energy Reviews. 2021. Vol. 137. Article No. 110603. DOI: 10.1016/j.rser.2020.110603.
Kuo C.M., Chen T.Y., Lin T.H., Kao C.Y., Lai J.T., Chang J.S., Lin C.S. Cultivation of Chlorella sp. GD Using Piggery Wastewater for Biomass and Lipid Production // Bioresource Technology. 2015. Vol. 194. Р. 326-333. DOI: 10.1016/j.biortech.2015. 07.026.
Chiu S.Y., Kao C.Y., Chen T.Y., Chang Y.B., Kuo C.M., Lin C.S. Cultivation of Microalgal Chlorella for Biomass and Lipid Production Using Wastewater as Nutrient Resource // Bioresource Technology. 2015. Vol. 184. Р. 179-189. DOI: 10.1016/j. biortech.2014.11.080.
Salama E.S., Kurade M., Abou-Shanab R.A., El-Dalatony M.M., Yang I.S., Min B., Jeon B.H. Recent Progress in Microalgal Biomass Production Coupled with Wastewater Treatment for Biofuel Generation // Renewable and Sustainable Energy Reviews. 2017. Vol. 79. Р. 1189-1211. DOI: 10.1016/J.RSER.2017.05.091.
Ogbonna J.C., Tanaka H. Light Requirement and Photosynthetic Cell Cultivation – Development of Processes for Efficient Light Utilization in Photobioreactors // Environ, Boil, Fishes. 2000. Vol. 12. Р. 207-218.
Molazadeh M., Ahmadzadeh H., Pourianfar H.R., Lyon S., Rampelotto P.H. The Use of Microalgae for Coupling Wastewater Treatment With CO2 Biofixation // Frontiers in Bioengineering and Biotechnology. 2019. Vol. 7. Р. 42. DOI: 10.3389/fbioe. 2019.00042.
Zhao Y., Wang J., Zhang H., Yan C., Zhang Y. Effects of Various LED Light Wavelengths and Intensities on Microalgae-Based Simultaneous Biogas Upgrading and Digestate Nutrient Reduction Process // Bioresource Technology. 2013. Vol. 136. Р. 461-468. DOI: 10.1016/j.biortech.2013.03.051.
Ma R., Thomas-Hall S.R., Chua E.T., Eltanahy E., Netzel M.E., Netzel G., Lu Y., Schenk P.M. LED Power Efficiency of Biomass, Fatty Acid, and Carotenoid Production in Nannochloropsis Microalgae // Bioresource Technology. 2018. Vol. 252. Р. 118-126. DOI: 10.1016/j.biortech. 2017.12.096.
Kim D.G., Lee C., Park S.M., Choi Y.E. Manipulation of Light Wavelength at Appropriate Growth Stage to Enhance Biomass Productivity and Fatty Acid Methyl Ester Yield Using Chlorella Vulgaris // Bioresource Technology. 2014. Vol. 159. Р. 240-248. DOI: 10.1016/j.biortech.2014.02.078.
Zhao Y., Sun S., Hu C., Zhang H., Xu J., Ping L. Performance of Three Microalgal Strains in Biogas Slurry Purification and Biogas Upgrade in Response to Various Mixed Light-Emitting Diode Light Wavelengths // Bioresource Technology. 2015. Vol. 187. Р. 338-345. DOI: 10.1016/j.biortech.2015.03.130.
Kuo C.M., Lin T.H., Yang Y.C., Zhang W.X., Lai J.T., Wu H.T., Chang J.S., Lin C.S. Ability of an Alkali-Tolerant Mutant Strain of the Microalga Chlorella sp. AT1 to Capture Carbon Dioxide for Increasing Carbon Dioxide Utilization Efficiency // Bioresource Technology. 2017. Vol. 244. Р. 243-251. DOI: 10.1016/j.biortech.2017.07.096.
Papone T., Kookkhunthod S., Paungbut M., Leesing R. Producing of Microbial Oil by Mixed Culture of Microalgae and Oleaginous Yeast Using Sugarcane Molasses as Carbon Substrate // Journal of Clean Energy Technologies. 2015. Vol. 4. Р. 253-256. DOI: 10.7763/JOCET.2016.V4.292.
Sakarika M., Kornaros M. Effect of pH on Growth and Lipid Accumulation Kinetics of the Microalga Chlorella Vulgaris Grown Heterotrophically Under Sulfur Limitation // Bioresource Technology. 2016. Vol. 219. Р. 694-701. DOI: 10.1016/j. biortech.2016.08.033.
Zhao B., Su Y. Process Effect of Microalgal-Carbon Dioxide Fixation and Biomass Production: A Review // Renewable and Sustainable Energy Reviews. 2014. Vol. 31. Р. 121-132. DOI: 10.1016/J.RSER.2013.11.054.
Ong S.C., Kao C.Y., Chiu S.Y., Tsai M.T., Lin C.S. Characterization of the Thermal-Tolerant Mutants of Chlorella sp. with High Growth Rate and Application in Outdoor Photobioreactor Cultivation // Bioresource Technology. 2010. Vol. 101. Р. 2880-2883. DOI: 10.1016/j.biortech.2009.10.007.
Liu G., Qiao L., Zhang H., Zhao D., Su X. The Effects of Illumination Factors on the Growth and HCO3 − Fixation of Microalgae in an Experiment Culture System // Energy. 2014. Vol. 78. Р. 40-47. DOI: 10.1016/j.energy.2014.05.043.
Bell T.A.S., Prithiviraj B., Wahlen B., Fields M.W., Peyton B.M. A Lipid-Accumulating Alga Maintains Growth in Outdoor, Alkaliphilic Raceway Pond with Mixed Microbial Communities // Frontiers in Microbiology. 2016. Vol. 6. Article No. 1480. DOI: 10.3389/fmicb.2015.01480.
Kumar A., Ergas S., Yuan X., Sahu A., Zhang Q., Dewulf J., Malcata F.X., van Langenhove H. Enhanced CO2 Fixation and Biofuel Production Via Microalgae: Recent Developments and Future Directions // Trends in Biotechnology. 2010. Vol. 28. P. 371-380. DOI: 10.1016/j. tibtech.2010.04.004.
Lilley R.M., Ralph P.J., Larkum A.W.D. The Determination of Activity of the Enzyme Rubisco in Cell Extracts of the Dinoflagellate Alga Symbiodinium sp. by Manganese Chemiluminescence and its Response to Short-Term Thermal Stress of the Alga // Plant, Cell and Environment. 2010. Vol. 33. Р. 995-1004. DOI: 10.1111/j.1365-3040.2010.02121.x.
Bechet Q., Shilton A., Fringer O.B., Munoz R., Guieysse B. Mechanistic Modeling of Broth Temperature in Outdoor Photobioreactors // Environmental Science and Technology. 2010. Vol. 44. Р. 2197-2203. DOI: 10.1021/es903214u.
Kuo C.M., Chang Y.B., Lin T.H., Yang Y.C., Zhang W.X., Lai J.T., Wu H.T., Lin C.S. Effects of a Protein-Enriched Crude Lysate from Chlorella sp. Against Acetaminophen-Induced Liver Injury // IOSR Journal of Biotechnology and Biochemistry. 2017. Vol. 3. Р. 82-88. DOI: 10.9790/264X-03018288.
Nayak M., Suh W.I., Lee B., Chang Y.K. Enhanced Carbon Utilization Efficiency and FAME Production of Chlorella sp. H2S Through Combined Supplementation of Bicarbonate and Carbon Dioxide // Energy Conversion and Management. 2018. Vol. 156. Р. 45-52. DOI: 10.1016/j.enconman.2017. 11.002.
Xu J., Cheng J., Xin K., Xu J., Yang W. Strengthening Flash Light Effect with a Pond-Tubular Hybrid Photobioreactor to Improve Microalgal Biomass Yield // Bioresource Technology. 2020. Vol. 318. Article No. 124079. DOI: 10.1016/j. biortech.2020.124079
Богданов Н.И. Суспензия хлореллы в рационе сельскохозяйственных животных. Пенза: Здоровье и экология, 2007. 48 с.
Adamczyk M., Lasek J., Skawinska A. CO2 Biofixation and Growth Kinetics of Chlorella Vulgaris and Nannochloropsis Gaditana // Applied Biochemistry and Biotechnology. 2016. Vol. 179. Р. 1248-1261. DOI: 10.1007/s12010-016-2062-3.
Wong Y.K., Ho K.C., Tsang Y.F., Wang L., Yung K.K.L. Cultivation of Chlorella Vulgaris in Column Photobioreactor for Biomass Production and Lipid Accumulation // Water Environment Research. 2016. Vol. 88. Р. 40-46. DOI: 10.2175/106143015X14362865227553.
Kusmayadi A., Philippidis G.P., Yen H.W., Biosci J. Application of Computational Fluid Dynamics to Raceways Combining Paddlewheel and CO2 Spargers to Enhance Microalgae Growth // Journal of Bioscience and Bioengineering. 2020. Vol. 129. Р. 93-98. DOI: 10.1016/j.jbiosc.2019.06.013.
Senatore V., Buonerba A., Zarra T., Oliva G., Belgiorno V., Boguniewicz-Zablocka J., Naddeo V. Innovative Membrane Photobioreactor for Sustainable CO2 Capture and Utilization // Chemosphere. 2021. Vol. 273. Article No. 129682. DOI: 10.1016/j.chemosphere.2021.129682.
Qiu R., Gao S., Lopez P.A., Ogden K.L. Effects of pH on Cell Growth, Lipid Production and CO2 Addition of Microalgae Chlorella Sorokiniana // Algal Research. 2017. Vol. 28. Р. 192-199. DOI: 10.1016/j.algal.2017.11.004.
Ren H., Tuo J., Addy M.M., Zhang R., Lu Q., Anderson E., Chen P., Ruan R. Cultivation of Chlorella Vulgaris in a Pilot-Scale Photobioreactor Using Real Centrate Wastewater with Waste Glycerol for Improving Microalgae Biomass Production and Wastewater Nutrients Removal // Bioresource Technology. 2017. Vol. 245. Р. 1130-1138. DOI: 10.1016/j.biortech.2017.09.040.
Kuo C.M., Jian J.F., Sun Y.L., Lin T.H., Yang Y.C., Zhang W.X., Chang H.F., Lai J.T., Chang J.S., Lin C.S. An Efficient Photobioreactors/Raceway Circulating System Combined with Alkaline-CO2 Capturing Medium for Microalgal Cultivation // Bioresource Technology. 2018. Vol. 266. Р. 398-406. DOI: 10.1016/j.biortech.2018.06.090.
Ramirez-Lopez C., Perales-Vela H.V., Fernandez-Linares L. Biomass and Lipid Production from Chlorella Vulgaris UTEX 26 Cultivated in 2 m3 Raceway Ponds Under Semicontinuous Mode During the Spring Season // Bioresource Technology. 2019. Vol. 274. Р. 252-260. DOI: 10.1016/j.biortech. 2018.11.096.
Zhang C.D., Li W., Shi Y.H., Li Y.G., Huang J.K., Li H.X. A New Technology of CO2 Supplementary for Microalgae Cultivation on Large Scale-A Spraying Absorption Tower Coupled with an Outdoor Open Runway Pond // Bioresource Technology. 2016. Vol. 209. Р. 351-359. DOI: 10.1016/j. biortech.2016.03.007.
Shuba E.S., Kifle D. Microalgae to Biofuels: «Promising» Alternative and Renewable Energy, Review // Renewable and Sustainable Energy Reviews. 2018. Vol. 81. Р. 743-755. DOI: 10.1016/ j.rser.2017.08.042.
Дворецкий Д.С., Дворецкий С.И., Темнов М.С. Технология получения липидов из микроводорослей. Тамбов: Изд-во ТГТУ, 2015. 1 CD-ROM.
Мещерякова Ю.В., Нагорнов С.А. Культивирование микроводоросли хлорелла с целью получения биотоплива // Вопросы современной науки и практики. Университет им. В.И. Вернадского. 2012. № S3 (43). С. 33-36.
Мамедова Ф.Т. Различные подходы к накоплению биомассы микроводорослей Chlorella Vulgaris и к процессам её биокаталитической трансформации: дис. … канд. хим. наук. М., 2015. 176 с.
Кругликова Л.Л., Савинова Д.М. Влияние фотометрических характеристик источника излучения на эффективность выращивания микроводоросли Chlorella Vulgaris // Современные техника и технологии: матер. XX междунар. науч.-практ. конф. студентов, аспирантов и молодых ученых. Томск: Изд-во ТПУ, 2014. Т. 1. С. 135-136.
Латыпов О.Р., Лаптев А.Б., Шевляков Ф.Б., Голубев И.А., Шапошников Н.О. Технология декарбонизации топочных газов нефтеперерабатывающих предприятий // Нефтегазовое дело. 2022. № 6. С. 231–263. DOI: 10.17122/ogbus-2022-6-231-263.
Загрузки
Опубликован
Выпуск
Раздел
Лицензия
Copyright (c) 2023 О. Р. Латыпов , А. Б. Лаптев , Ф. Б. Шевляков , И. А. Голубев , Н. О. Шапошников
Это произведение доступно по лицензии Creative Commons «Attribution» («Атрибуция») 4.0 Всемирная.
